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细胞简介：

大鼠结肠黏膜上皮细胞分离自结肠组织；结肠在右髂窝内续于盲肠，在第3骶椎平面连接直肠。结肠分升结肠、横结肠、降结肠和乙状结肠4部分，大部分固定于腹后壁，结肠的排列酷似英文字母“M”，将小肠包围在内。结肠横切面由内到外依次为：黏膜（上皮层、固有层、黏膜肌层），黏膜下层（疏松结缔组织），肌层（内环形、外纵行两层平滑肌），外膜（纤维膜或浆膜）。肠黏膜上皮细胞是机体内外环境的重要屏障，持续暴露于大量抗原中，也是机体面对病原微生物的**道防线。因此，肠黏膜上皮细胞除有吸收、分泌和转运等重要生理功能之外，在黏膜先天性和获得性免疫防御机制中也起着重要作用。肠黏膜上皮细胞作为首先接触抗原的细胞，在黏膜免疫反应的起始阶段发挥关键作用，它决定黏膜免疫反应的发生、性质和强度。探讨正常结肠黏膜上皮细胞的分离、体外培养方法，为研究肠黏膜上皮细胞以及与肠黏膜相关疾病建立合适的细胞模型。

方法简介：

公司实验室分离的大鼠结肠黏膜上皮细胞采用先机械分离法、后胶原酶消化法并通过上皮细胞专用培养基培养筛选制备而来，细胞总量约为5×10?cells/瓶。

质量检测：

公司实验室分离的大鼠结肠黏膜上皮细胞经Cytokeratin-18免疫荧光鉴定，纯度可达90%以上，且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。

培养信息：

包被条件 鼠尾胶原Ⅰ（2-5μg/cm2）

培养基 含FBS、生长添加剂、Penicillin、Streptomycin等

换液频率 每2-3天换液一次

生长特性 贴壁

细胞形态 上皮细胞样

传代特性 可传1-2代

消化液 0.25%胰蛋白酶

培养条件 气相：空气，95%；CO2，5%
分离与培养流程

组织处理：无菌获取组织后，用PBS清洗并剪碎至1mm³大小；

酶消化：胶原酶/胰酶混合消化（37℃, 10-20分钟），离心收集细胞悬液；

纯化：密度梯度离心或差速贴壁法去除杂细胞（如红细胞、成纤维细胞）；

接种培养：使用组织特异性培养基（如肝细胞专用培养基含生长因子），在37℃、5% CO₂条件下培养。

质量控制标准

纯度验证：免疫荧光检测细胞特异性标志物；

无菌检测：排除HIV-1、HBV、HCV、支原体等污染；

活力要求：复苏后存活率≥80%，贴壁率≥70%；

批次一致性：提供细胞计数、活力检测及功能验证报告（如代谢酶活性）。

运输与保存

运输形式：

冻存管（干冰运输，含冻存液：90%血清+10% DMSO）；

培养瓶（常温运输，培养基充满至瓶口）。

保存条件：

液氮（长期，≤-150℃）；

-80℃（短期，≤1个月）。

注：收到细胞需立即检查包装完整性并记录状态。

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